پروژهبررسی نقش نیتریک اکساید در تحمل به مرفین در موشهای صحرایی تخمدان برداری شده. doc

اختصاصی از نیک فایل پروژهبررسی نقش نیتریک اکساید در تحمل به مرفین در موشهای صحرایی تخمدان برداری شده. doc دانلود با لینک مستقیم و پر سرعت .

نوع فایل: word

قابل ویرایش 107 صفحه

مقدمه:

در مطالعه حاضر نقش نیتریک اکساید در تحمل به مرفین در موشهای صحرائی تخمدان برداری شده مورد بررسی قرار گرفت. تعداد 90 سر موش صحرائی ماده تهیه و به 10 گروه تقسیم شدند. 1- گروه کنترل(Sham) 2- کنترل- تحمل Tol) Sham-) 3-گروه اوارکتومی (OVX)4 - گروه اوارکتومی – تحمل (Tol- OVX ) 6،5و 7-گروههای اوارکتومی تحت درمان با ال آرژنین(50،10 و200 Mg/kg) (Tol – LA) 8 و 9- گروههای اوارکتومی تحت درمان با ال نیم(10 و 50)     (Tol – LN). گروه های 3 تا 9 اوارکتومی شدند. 8 هفته بعد از تخمدان برداری، تحمل به مرفین در گروههای 2 و 4 تا 9 از طریق تزریق داخل صفاقی 20 میلی گرم به ازای هر کیلو گرم وزن بدن مرفین در طی 4 روز ایجادشد. حیوانات گروه 6،5 و 7 همزمان با ایجد تولرانس 50،10 و 200 میلی گرم به ازای هر کیلو گرم وزن بدن ال آرژنین دریافت کردند. حیوانات گروه 9 ، 8 همزمان با دریافت 20 میلی گرم به ازای هر کیلو گرم وزن بدن مرفین، 10 و 50 میلی گرم به ازای هر کیلو گرم وزن بدن ال نیم دریافت کردند. سنجش درد بوسیله تست صفحه داغ (Hot plate ) انجام گرفت. در روز پنجم، ابتدا از حیوانات ثبت پایه گرفته شد سپس حیوانات 5 میلی گرم به ازای هر کیلو گرم وزن بدن مرفین دریافت کردند و اثرات ضد دردی هر 10 دقیقه بررسی شد.

نتایج نشان داد که زمان واکنش به درد بعد از تزریق 5 میلی گرم به ازای هر کیلو گرم وزن بدن مرفین نسبت به زمان پایه در گروه کنترل و اوارکتومی بالا بود اما تفاوتی در گروههای کنترل – تحمل و اورکتومی – تحمل وجود نداشت. اگرچه زمان واکنش به درد بعد از تزریق 5 میلی گرم به ازای هر کیلو گرم وزن بدن مرفین در گروه کنترل از گروه اوارکتومی بالاتر بود. اما تفاوتی بین گروههای کنترل- تحمل و اوارکتومی – تحمل مشاهده نشد.

Repeated measure AVOVA نشان داد که زمانهای واکنش بعد از تزریق 5 میلی گرم به ازای هر کیلو گرم وزن بدن مرفین در گروه اوارکتومی –تحمل پایین تر از هر سه گروه دریافت کننده ال آرژنین بود که نشان دهنده این مطلب است که ال آرژنین تحمل به مرفین در موش های صحرایی اوارکتومی شده را کاهش می دهد. نتایج همچنین نشان داد که زمان واکنش به درد بعد از تزریق 5 میلی گرم به ازای هر کیلو گرم وزن بدن مرفین در گروه اوارکتومی- تحمل نسبت به گروههای دریافت کننده ال نیم پایین تر است. این یافته نشان می دهد که ال نیم نیز تحمل به مرفین در موشهای صحرایی تخمدان برداری شده را کاهش می دهد.

نتایج نشان می دهد که تکرار مصرف مرفین می تواند منجر به تحمل شود. اگر چه تفاوتی بین تحمل در حضور و یا عدم حضور هورمون های جنسی ماده وجود ندارد اما ال آرژنین و ال نیم تحمل به مرفین را کاهش می دهند.

کلمات کلیدی:موش صحرایی تخمدان برداری شده، نیتریک اکساید، ال آرژنین، ال نیم، تحمل.

فهرست مطالب:

فصل اول _ مقدمه

1-1 معرفی و بیان مسئله پژوهش

1-2 هورمونهای استروئیدی

1-2-1 محل ترشح هورمونهای جنسی زنانه

1-3 مکانیسم عمل استروژن

1-4 استروژن و سیستم عصبی

1-4-1 استروژن و نوروترانسمیترها

1-4-2 استروژن و سیستم کولینرژیک

1-4-3 استروژن و سیستم سرتونرژیک

1-4-4 استروژن و سیستم کاتیکولامینرژیک

1-5 استروژن و خلق و خوی

1-6 استروژن و

1-7 استروژن و گر گرفتگی

1-8 اثرات استروژن بر حافظه و یادگیری

1-9 استروژن و محافظت عصبی و بیماری آلزایمر

1-10 استروژن و بیماری پارکینسون

1-11 استروژن و درد

1-12 اپیوئیدها

1-12-1 گیرنده های اپیوئیدی

1-12-2 طبقه بندی اپیوئیدها

1-12-3 مکانیسم های سلولی عمل اپیوئیدها

1-13 بی دردی

1-14 پیامد های مصرف اپیوئیدها

1-15 مکانیسم های نورو شیمیائی تحمل نسبت به اپیوئیدها

1-16 نیتریک اکساید

1-16-1 سنتز و حذف نیتریک اکساید

1-16-2 مهار کننده آنزیم نیتروکساید سنتتاز

1-17 اعمال فیزیولوژیک نیتریک اکساید

1-18 اثرات هورمونهای گنادی بر سیستم های مرکزی تولید کننده نیتریک اکساید

1-19 اثر تنظیمی هورمونهای استروئیدی تخمدانی بر تولید نیتریک اکساید

1-17-1 شکل ظاهری معده

1-17-2 سطوح معده

1-18 عروق خونی معده

1-18-1 شرائین معده

1-18-2 وریدهای معده

1-19 عصب رسانی معده

1-20 غدد معدی

1-21 فعالیت حرکتی معده

1-22 فعالیت الکتریکی و انقباضات معده

1-23 ارتباط معده و دوازدهه

1-24 تنظیم تخلیه معده

1-25 نحوه ترشح اسید معده

1-26 کنترل غلظت اسید معده

1-27 مکانسیم سلولی آگونیستهای سلول پاریتال

1-28 آنتاگونیستهای ترشح اسیدمعده

1-29 کنترل in vivo میزان ترشح اسید

1-29-1 مرحله سری

1-29-2 مرحله معدی

1-29-3 مرحله روده ای

1-30 تحریک ترشح اسیدمعده

1-31 مهار ترشح اسید معده

فصل دوم _ روش کار

2-1 مواد و روشها

2-2 نحوه تجزیه و تحلیل داده هاو روش آماری

2-3 روشهای عصاره گیری

2-3-1 روش خیساندن

2-3-2 روش تراوش

2-3-3 روش هضم

2-3-4 روش جوشاندن

2-3-5 روش سوکسیله

2-4 روش بیهوشی

2-5 روش انجام آزمایش

2-6 روش اندازه گیری اسید نمونه

3-7 ترانسدیوسر

فصل سوم _ نتایج

3-1 داده های مربوط به ترشح اسیدمعده

3-2 داده ها یمربوط به فعالیت حرکتی معده

فصل چهارم _ بحث و نتیجه گیری

4-1 نتایج مربوط به تاثیر گیاه بومادران بر ترشح اسیدمعده

4-2 نتایج مربوط به تاثیر گیاه بومادران بر حرکات معده

4-2-1 اثر بر فشار داخل معده

4-2-3 اثر بر دامنه انقباضات

4-2-3 اثر بر فرکانس انقباضات

پیشنهادات

منابع

منابع ومأخذ:

1. Acheson, A. Waraczynski,M.,Perkins,M.; lesions and inactivation implicate dorsolateral hindbrain I MFB self administration.Physiol.Behave (2000) 71(1-2) :159-171.       

1. Adams, M.L. Kalicki J.M, Meyer. E.R and Cicero T.J; Inhibition of the morphine withdrawal syndrome by nitric oxide inhibitor. N-nitro- -arginine methyl ester. (1993) 52(22):245-249.
2. Amandusson, A, Hermanson ,O. Blomqvist A; Colocalization of oestrogen receptor immunoreactivity and preproenkephalin mRNA expression to neurons in the superficial laminae of the spinal and medullary dorsal horn of rats. Eur J Neurosci (1996) 8(11):2440–2445.
3. Archer JS, Love-Geffen TE, Herbst-Damm KL, Swinney DA, Chang JR. Effect of estradiol versus estradiol and testosterone on brain-activation patterns in postmenopausal women. Menopause. (2006 )13(3):528-37.
4. Bach, y. Rita, P. Neurotransmission in the brain by diffusion through the extracellular fluid. Neruro.Report. (1993) 4: 343-350.
5. Barclay,S. R, Hading,C. Differential modulation of monomania levels and turn over ates by estrogen and/or androgen in hypothalamic and vocal control nuclei of male zebra fiches, Brain Res. (1990) 523(2): 251-262.
6. Beatty, W.W and. Fessler, R.G, Gonadectomy and sensitivity to electric shock in the rat. Physiol Behav (1977) 19(1): 1–6.
7. Banerjee P, Chatterjee TK, Ghosh JJ. Ovarian steroids and modulation of morphine-induced analgesia and catalepsy in female rats Eur J Pharmacol. 1983;96(3-4):291-4.
8. Bruce ,S. McEwen and Stephen ,E. Alves , Estrogen Actions in the Central Nervous System, Endocrine Reviews (1999) 20 (3): 279-307.
9. Buhimschi ,I A. Yallampalli ,C. et al: Distinic regulation of nitric oxide and cyclic guanosine phosphat production by steroid hormones in the rat uterus. Mol Hum Repord .( 2000) ; (5) : 404-14.
10. Cammack, J. Ghasemzade ,B. and Adams R.N. the pharmacological profile of glutamate-evoked ascorbic efflux measured by in vivo electrochemistry. Brain Res. (1991) 565:17-22.
11. Giamberardino MA, Affaitati G, Valente R, Iezzi S, Vecchiet L. Changes in visceral pain reactivity as a function of estrous cycle in female rats with artificial ureteral calculosis. Brain Res (1997): 234–238.
12. Cicero, T.J.B. Nock and E.R. Meyer, Gender-related differences in the antinociceptive properties of morphine. 279 (1996) 774(1-2): 767–773.
13. Cicinelli ,E. et al: Effect of short-term transdermal estradiol administration on plasma levels of nitric oxide in postmenopausal women. Fertile Stril .(1998) 69(1):58-61.
14. Cooper, E.J. Ston, A. File, S. Effects of naturally occurring neurosteroid on GABA IPSP during development in rat hippocampal or cerebellar slices .J Physiol. 1995; 2:437-49.
15. Coustodia, LN. Novill ,OA .Callardia , P. Effect of gonadal steroids on progesterone receptor and estrogen receptor and vitellogenin expression in mal tuitles. J Exp Zool. (2004) 301(1):15-55.
16. Dambisya, Y.M. Lee,T.L . Role of nitric oxide in the induction and expression of morphine tolerance and dependence in mice. Br. J. Pharmacol. 117. (1996): 914–918.
17. Darable, BC. Pendarics, C. Krust, A. et al: Estradiol alters nitric oxide production in the mouse aorta through the alpha-, but not beta-, estrogen receptor. Circ Res. (2002) 90(4): 413-19.
18. Davoodi ,f. Javan, M. Ahmadiani,A.The Effect of Morphine Tolerance Development and the Possible Role of Nitric Oxide in this Process.(2005) 4(3): 167-173.

1. Erin SC, Ulibarri CM, Craft RM. Gonadal steroid hormone modulation of nociception, morphine antinociception and reproductive indices in male and female rats. Pain( 2006) 103(3): 285-302.
2. Fillingim ,R. B. and Ness T. J. Sex-related hormonal influence s on pain and analgesic responses (2000) 6 (5): 485-501.
3. Freedman, RR, Woodward, S. Sabharwal, SC. Alpha2-Adrenergic mechanism in menopausal hot flushes. Obstet Gynecol.(1990) ;76:573-8.
4. Forman, L.J. Tingle V, Estilow S and. Cater, J. The response to analgesia testing is affected by gonadal steroids in the rat. (1989) 45(5): 447–454.
5. Fundytus, M.E. Coderre,T.J. Effect of activity at metabotropic as well as ionotropic(NMDA), glomate recepyor on morphine dependence. Br.J.Pharmacol. (1994) 113(4): 1215-1220.
6. Gardiner,T.W. Armstrong-James,M. Caan, A.W. Wightman, Rebrc R.M. odulation, G.V. Modulation of neostriatal activity by iontophoresis of ascorbic acid. Brain Res. (1985):181-185.
7. Gibbs RB, Aggarwal P Estrogen and basal forebrain cholinergic neurons: implications for brain aging and Alzheimer’s disease-related cognitive decline. Horm Behav (1998).34:98–111.
8. Gonzales, GF. Carillo, C. Blood serotonin levels in postmenopausal women: effects of age and serum oestradiol levels. Maturitas. (1993);17:23-9.
9. Greene ,RA. et al. Comparison between regional cerebral blood flow in hypoestrogenic women and patients with Alzheimer's disease -- a descriptive study. Neurobiol Aging (1998) 10(4): S180.
10. Greene ,RA. Measurement of estrogen's effects on the brain using modern imaging techniques. Menopausal Med. (1999); 7(4):9-12.
11. Guyton A, C. Hall, J E.; Medical Physiology (2000): 1517-1520.
12. Hammond ,CB. Therapeutic Options for Menopausal Health: Combating Age and Disease. Durham, NC: Duke University School of Medicine and Wyeth-Ayerst Pharmaceuticals. Continuing Education Monograph,( 2000): 1-40.
13. Harlan RE Regulation of neuropeptide gene expression by steroid hormones. Mol Neurobiol .(1988) ; 2:183–200.
14. Haynes ,MP. Sinha ,D. Russell ,KS. Memberane estrogen receptor engagement activates end thelial nitricoxide via the PI3-Kinase-Akt pathway in human endothelial cells. Circ Research. (2000); 87(8):677-82.
15. Herman ,BH. vocci ,F. Bridge, P. The effect of NMDA reseptor antagonists and nitric oxid synthase inhibitors on opioid tolerance and withdrawal. Medication development issues for opiate addiction. Neuropsychophrmacology.(1995); 13(4):269-93.
16. Herz, A. Opioid reward Mechanisms a key role in drug abuse. Cana.J.Pharmacology (1998),76(3) 252-258.
17. Hess, RA. Bunick, D. Lee ,KH. Bahr, J. Taylor, JA. Korach KS, Lubahn DB. "A role for oestrogens in the male reproductive system". Nature (1997); 390(6659) : 509–12.
18. Hosseini .M,Sharifi .M, Alaei .H, Shaefei .M.N, Nemati Karimooy .H. Effect of angiotensin II and caotopril on rewarding propreties of morphine. (2007) 45(9):770-777
19. Holtman, JR. Sloan, JW. Wala, EP. Morphine tolerance in male and female rats. Pharmacol Biochem Behav. (2004) 77(3): 517-23.
20. Homayon H, Khavandgar S , Nnamiranian Kh , Dehpor A. R. The effect of cyclosporine A on morphine tolerance and dependence: involvement of L- arginine/ nitric oxide pathway (2002) 507(1-3): 67-75.
21. Islam, A.K. Islam, M.L. Cooper and R.J. Bodnar, Interactions among aging, gender, and gonadectomy effects upon morphine antinociception in rats. Physiol Behav 54: (1993).
22. Kelly, MJ. Lagrange, AH. Wagner, EJ. Rønnekleiv, OK. Rapid effects of estrogen to modulate G protein-coupled receptors via activation of protein kinase A and protein kinase C pathways. Steroids. (1999);64(1-2):64-75.
23. Kest, B. Wilson ,SG. Mogil ,JS. Sex differences in supraspinal morphine analgesia are dependent on genotype. J Pharmacol Exp Ther. (1999); 289(3) :1370 –1375
24. Kiefel, J.M. and Bodnar R.J. Roles of gender and gonadectomy in pilocarpine and clonidine analgesia in rats. Pharmacol Biochem Behav (1992); 41(1): 153 -8.
25. Kimes, A.S. Vaupel, D.B. and London ,E.D. Attenuation of some signs of opioid withdrawal by inhibitors of nitric oxide synthase. Psychopharmacology (Berl). (1993);112(4):521-4.
26. Klaiber, EL. Broverman, DM. Vogel ,W. Peterson ,LG. Snyder MB. Relationships of serum estradiol levels, menopausal duration, and mood during hormonal replacement therapy. Psychoneuroendocrinology(1997) 22(7): 549-58.
27. Kepler, K.L.. Kest ,B, Kiefel. J.M.,. Cooper M.L and Bodnar R.J. Roles of gender, gonadectomy and estrous phase in the analgesic effects of intracerebroventricular morphine in rats. Pharmacol Biochem Behav (1989) 34(1): 119–12
28. Koppenol, W.H. and Traynham, J.G. Say NO to nitric oxide: nomenclature for nitrogen- and oxygen-containing compounds.. Methods Enzymol. (1996); 268: 3-7.
29. Kuipe, GGJM. Shughrue ,PJ. Merchenthaler, I, Gustafsson J-A The estrogen receptor ß subtype: a novel mediator of estrogen action in neuroendocrine systems. Front Neuroendocrinol (1998) 19:253–286.
30. Martinez-Gomez., M.Y. Cruz, M. Salas, R. Hudson and P. Pacheco, Assessing pain 0threshold in the rat: changes with estrus and time of day. Physiol Behav (1994) 55(4): 651–657.
31. Mc Ewen, B. S.(1991). Non-genomic and genomic effects of steroids on neural activity. Trends Pharmacol Sci(1991) ; 12(4): 141-147.
32. Mc Dermott, JL. Liu , B. Dluzen, DE. Sex differences and effects of estrogen on dopamine and DOPAC release from the striatum of male and female CD-1 mice. Exp Neurol.(1994) 125(2) :306-11.
33. McMinn , RMH. Hutchings, RT. eds. Color Atlas of Human Anatomy. Chicago, Ill: Year Book Medical Publishers, Inc.(1990).25.
34. Mefford, L.N.,Oke,A.F. and Adams, R.N. Regional distribution of ascorbate in human brain. Brain Res( 1981); 212(1): 223-226.
35. Meller ST, Gebhart GF. Nitric oxide (NO) and nociceptive processing in thespinal cord, Pain. (1993) 52(2):, 127–136.
36. Meller ST, Cummings CP, Traub RJ, Gebhart GF.The role of nitric oxide in the development and maintenance of the hyperalgesia produced by intraplantar injection of carrageenan in the rat.Neuroscience. 1994 60(2):367-74.
37. Meller ST, Pechman PS, Gebhart GF, Maves TJ. Nitric oxide mediates the thermal hyperalgesia produced in a model of neuropathic pain in the rat. Neuroscience. 1992 Sep;50(1):7-10.
38. Miaskowski.C and J.D. Levine, Does opioid analgesia show a gender preference for females?. Pain Forum (1999) 8: 34–44.
39. Minami, T. Oomura, Y. Nabekura ,J. Fukuda, A; 17ß-Estradiol depolarization of hypothalamic neurons is mediated by cyclic AMP. Brain Res (1990);519:301–307.
40. Mogil, JS. Sternberg ,WF. Kest, B. Marek, P. Liebeskind ,JC. Sex differences in the antagonism of swim stres-induced analgesia: effects of gonadectomy and estrogen replacement. Pain (1993); 53:17–25.
41. Moore,N.A. Blackman,A. Awere,S. and Leander,J.D. NMDA resptor antagonists inhibit catalepsy inhibit catalepsy induced by either dopamine D1 or D2 reseptor antagonists. Eur .J.Pharmacol. (1993) 237(1):1-7.
42. Ogando, D. Farina, M. et al: Steroid hormones augment nitric oxide synthase activity and experssion in rat uterus, Repord Fertil Dev.( 2003); 15(5): 269-74.
43. Okutomi, T. Nometo, K; Nitric oxide metabolite in pregnant women before and after delivery Acta Obstet Gynecol Scand. (1997) ; 79(3):222-6 .
44. Packard, M. G. Kohlmaier ,J. R. Alexander, G. M. Post-training intrahippocampal estriol injections enhance spatial memory in male rats; Interaction with cholinergic systems, Behav Neurosci. (1996); 79(3) : 626-632.
45. Panzica , G.C. Viglietti-Panzica, M. Sica, S. Gotti, M. Martini, H. Pinos, B. Carrillo and P. Collado: Effects of gonadal hormones on central nitric oxide producing systems .(2005) ;138(3): 987-995
46. Panzica GC, Melcangi RC. The endocrine nervous system: source and target for neuroactive steroids Brain Res Rev.( 2008) 57(2):271-6 .
47. Pataki Iand Telegdy, G. 1998, Further evidence that nitric oxid modifies acute and chronic morphine actions in mice. Eur.J.pharmaco. (1998); 357(2-3) :157-62.
48. Perry DC. Barrel rotation in rats induced by intracerebroventricular bradykinin antagonists. Pharmacol Biochem Behav.(1987);28(1):15-20.
49. Perry,D.C. Ggrimes,L.M. Administration of kainic acid and colchicine alters mu and lambda opiate binding in rat hippocampus. Brain Res. (1989) 477(1-2):100-8.

1. Pert, C.B., SYNDER, S.H.; opiates-reseptor demonstration in nervous tissue.Scince .(1973),1011-1013.
2. Pert,C.B.; Autoradiographic localization of the opiate receptor in rat brain.Life sci.16 (1975); 179(77): 849-852.
3. Pettit, H. Destruction of dopamine in the nucleus accumbense selectively attenuates cocaine but not heroin self-administartion in rats. Psychopharmacology (1984); 84:167-173.
4. Rahimian, R. Laher ,I. Dube, G. Van Breemen C. Esterogen and selective esterogen receptor modulator LY 117018 enhance release of nitric oxide in rat aorta. Pharmacol EXP. (1997) 283(1): 116-22.
5. Rehavi ,M. Sepcuti ,H. Weizman ,A. Upregulation of imipramine binding and serotonin reuptake by estradiol in female rat brain. Brain Res.( 1987);410:135-9.
6. Ruifen ,B. Boroutman ,G. The thyrosinkinase and mitogen activated proteinkinase pathways mediate multiple effects of estrogen in hippocampus. Proc Natl Acad Sci.( 2000); 97:3602-7.
7. Sapolsky, R .Stress,The Aging Brain and the Mechanisms of Neuron Death. Cambridge MIT Press, Cambridge MA.( 1992 ).
8. Saunders-Pullman ,R. Gordon-Elliot ,J. Parides, M,. et al. The effect of estrogen replacement therapy on early Parkinson's disease. Neurology.( 1999); 52(7): 1417-21.
9. Sdambisya,Y.M . Lee, T.L Role of nitric oxide in the induction and expression of morphine tolerance and dependence in mice. Br. J. Pharmacol. (1996); 117: 914–918.
10. Sherwin ,BB. Estrogen and/or androgen replacement therapy and cognitive functioning in surgically menopausal women. Psychoneuroendocrinology. (1988); 13(4): 45-57.
11. Sherwin ,BB. Tulandi, T. "Add-back" estrogen reverses cognitive deficits induced by a gonadotropin-releasing hormone agonist in women with leiomyomata uteri. J Clin Endocrinol Metab. (1996); 82(2): 2545–2549
12. Shughrue, PJ. Lane , MV. Merchenthaler I. Comparative distribution of estrogen receptor- and -ß mRNA in the rat central nervous system. J Comp Neurol (1997); 388(4):507–525 .
13. Singh, M. Meyer, EM. Millard, WJ. Simpkins ,JW; 1994 Ovarian steroid deprivation results in a reversible learning impairment and compromised cholinergic function in female Sprague-Dawley rats. Brain Res (1994) ; 644:305–312.
14. Tang ,MX. Jacobs, D. Stern, Y. et al. Effect of oestrogen during menopause on risk and age at onset of Alzheimer's disease. Lancet. 1996;348(9025):429-32.
15. Terner ,JM. Barrett, AC. Grossell, E. Picker, MJ. Influence of gonadectomy on the antinociceptive effects of opioids in male and female rats. Psycho-pharmacology. (2002); 163(2):183 –193.
16. Tanda G, Di Chiara G. A dopamine-mu1 opioid link in the rat ventral tegmentum shared by palatable food (Fonzies) and non-psychostimulant drugs of abuse. Eur J Neurosci. (1998) 10(3):1179-87.
17. Thind, KK.Goldsmith, PC. Expression of estrogen and progesterone receptors in glutamate and GABA neurons of the pubertal female monkey hypothalamus. Neuroendocrinology (1997); 65:314–32.
18. Wagner,,J.J. et al.: Endogennous dynorphins inhibit excitatory neurotransmission and block LTP induction in the hippocampus. Nature (1993); 363:451-454.
19. Warembourg ,M, Leroy ,D. Peytevin, J. Martinet, L. 1998 Estrogen receptor and progesterone receptor-immunoreactive cells are not co-localized with gonadotropin-releasing hormone in the brain of the female mink (Mustela vison). Cell Tissue Res (1998) ; 291:33–41.
20. Watts AG, Stanely HF. Indoleamines in the hypothalamus and area of the midbrain raphe nuclei of male and female rats throughout postnatal development. Neuroendocrinology.(1984); 38:461–466.
21. Weiner ,WJ. et al. Menopause and estrogen replacement therapy in Parkinson's disease . Neurology. (1996) 46:376.
22. Winer ,CP. Tampson, LP; Nitric oxide and pregnancy, Seminars in Perinatology .(1997); 21:207-80.
23. Wong,C.S. Cherng,C. H, Luk,H.N. Effects of NMDA reseptor antagonists on inhibition of morphine tolerance in rats:binding at mu-opioid reseptor. Eur.J.Pharmacol. (1996); 297(1-2):27-33.
24. Xu H, Gouras, GK. Greenfield ,JP. et al. Estrogen reduces neuronal generation of Alzheimer beta-amyloid peptides. Nat Med. (1998); 4(4): 447-51.
25. Zhu Y-S, Cai L-Q, You X, Duan Y, Imperato-McGinley J, Chin W, Pfaff DW. Molecular analysis of estrogen induction of preproenkephalin gene expression and its modulation by thyroid hormones.Brain Res Mol Brain Res. (2001) ;91(1-2):23-33.
26. Zimmermann, M .and T. Herdegen, Plasticity of the nervous system at the systemic, cellular, and molecular levels: a mechanism of chronic pain and hyperalgesia. In: G. Carli and M. Zimmermann, Editors, Towards the neurobiology of chronic pain, Elsevier, Amsterdam (1996), 233–259.
27. مقیمی. ف ، بررسی اثر پیشساز و مهارکننده‌های نیتریک اکساید سنتاز بر درد، و بیدردی حاصل از مورفین در تست فرمالین در موش سوری. پایان نامه کارشناسی ارشد(1379).
28. صوفی آبادی ،م .گل، ع. عباس نژاد ،م. پرویزی،م. اثر تنظیمی هورمون های استروئیدی تخمدانی بر تولید نیتریک اکساید در مو شهای صحرایی.مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان.(1382). شماره 3و 4: 129-124.

تحقیق در مورد آزمایش تعیین وزن مخصوص صحرایی خاک به کمک مخروط ماسه 3 ص

اختصاصی از نیک فایل تحقیق در مورد آزمایش تعیین وزن مخصوص صحرایی خاک به کمک مخروط ماسه 3 ص دانلود با لینک مستقیم و پر سرعت .

لینک دانلود و خرید پایین توضیحات

فرمت فایل word  و قابل ویرایش و پرینت

تعداد صفحات: 3

نام آزمایش :

تعیین وزن مخصوص صحرایی خاک به کمک مخروطه ماسه

هدف آزمایش :

بدست آوردن وزن واحد حجم خشک خاک صحرا در حالت طبیعی با استفاده از ماسه کالیبره شده یا ماسه اتاوا.

وسایل مورد نیاز :

مخروط ماسه که مرکب از یک استوانه و مخروط فلزی متصل به آن که یک دریچه میان این 2 می باشد ( دستگاه سند باتل)

سینی مخصوص که دستگاه روی آن قرار می گیرد یک دایره میان آن قرار دارد .

وسایل حفر چاله

ترازو

ماسه اتاوا

کاردک

ظرف برای برداشت نمونه صحرا

روش آزمایش :

ابتدا وزن دستگاه را به طور خالی اندازه می گیریم و بعد درب دستگاه را بسته و مقداری ماسه اتاوا داخل دستگاه می ریزیم و بعد دوباره دستگاه را با ماسه وزن می کنیم تا وزن ماسه درون دستگاه مشخص شود .بعد به صحرا رفته و سینی مخصوص را روی زمین می گذاریم . سپس با وسایل حفاری به اندازه 5/1-1 برابر قطر دایره روی سینی زمین را حفر می کنیم و خاک حاصل از حفاری را در ظرفی که قبلا وزن آن را گرفته ایم می ریزیم .سپس دستگاه را در جای مخصوص آن روی سینی قرار می دهیم و دریچه دستگاه را باز می کنیم . تا ماسه از دستگاه خارج و به داخل حفره وارد شود . و بعد از اینکه ارتفاع ماسه داخل دستگاه ثابت شد دریچه دستگاه را می بندیم . سپس دستگاه را به همراه نمونه خاک صحرا به آزمایشگاه می بریم . وزن دستگاه بعد از خروج ماسه و وزن نمونه را می گیریم .سپس نمونه ای از خاک صحرا را در ظرفی که قبلا وزن شده می ریزیم و وزن می کنیم و بعد داخل دستگاه خشک کن قرار می دهیم تا 24 ساعت در دستگاه قرار می گیرد .سپس وزن خشک نمونه را می گیریم تا درصد رطوبت خاک صحرا به دست آید .

سپس چگالی ماسه استفاده شده را بدست می اوریم تا بوسیله آن چگالی خاک صحرا را بدست اوریم . در انتها مقدار حجم ماسه درون مخروط را از ماسه خروجی کم می کنیم تا حجم واقعی ماسه درون گودال را بدست آوریم .

بدین منظور یک بار دستگاه را درون ظرف خالی قرار داده و دریچه آن را باز می کنیم تا ماسه به اندازه حجم مخروط خارج شود . و از این طریق حجم مخروط را محاسبه می کنیم .

محاسبات :

85/149 =وزن ظرف خالی 1 = W2 2305= وزن دستگاه خالی W1=

41/1325= وزن نمونه صحرا با ظرف 1 = W4 5545 =وزن دستگاه با ماسه W3=

50/61=وزن ظرف خالی 2 w6=‌ 3352=وزن دستگاه پس از خروج ماسه W5= ‌

3/389=وزن ماسه درون مخروط =W8 9/167 =وزن ظرف 2 با نمونه صحرا =W7

5/1 4/1 = ماسه 89/154=وزن ظرف 2 با نمونه خشک صحرا =W9

=وزن ماسه درون دستگاه

56/1175=85/149-41/1325وزن خاک صحرا

Cm 5/9 =R مخروط

Gr 85/44=50/61-35/106= وزن نمونه خاک صحرا

ماسه رفته

رفته

ماسه

ماسه

یا

گودال

خاک صحرا

درصد رطوبت خاک صحرا

وزنی مخصوص خشک خاک

اثر عصاره گلبرگ زعفران بر مسمومیت کبدی ناشی از استامینوفن در موش صحرایی

اختصاصی از نیک فایل اثر عصاره گلبرگ زعفران بر مسمومیت کبدی ناشی از استامینوفن در موش صحرایی دانلود با لینک مستقیم و پر سرعت .

با توجه به تجویز روزانه مقادیر زیادی از دارو­ها توسط پزشکان، در سال­های اخیر توجه زیادی به اثر گیاهان در درمان و پیشگیری مسمومیت ناشی از داروها معطوف شده است. مسمومیت با استامینوفن یکی از علل مهم آسیب­های کبدی است. در تحقیق حاضر اثر محافظتی عصاره هیدروالکلی گلبرگ زعفران در مسمومیت کبدی حاد ناشی از استامینوفن مورد بررسی قرار گرفته است. در این مطالعه 36 سر موش صحرایی نر نژاد ویستار در شش گروه شش تایی توزیع گردیدند. به گروه یک به عنوان شاهد سالم، سرم فیزیولوژی و به گروه دو به عنوان شاهد مسموم، استامینوفن (600 میلی­گرم/کیلوگرم) تجویز شد. به گروه­های سه و چهار به ترتیب عصاره گلبرگ زعفران با دز­های 10 و 20 میلی­گرم/کیلوگرم و به گروه­های پنج و شش عصاره گلبرگ زعفران (به ترتیب 10و 20 میلی­گرم/کیلوگرم) همراه با استامینوفن (600 میلی­گرم/کیلوگرم) تجویز گردید. در پایان دوره برای سنجش پارامتر­های بیوشیمیایی و هپاتولوژیک خونگیری از قلب انجام شد و پس از آن جهت بررسی­های هیستوپاتولوژیک، کبد حیوانات در فرمالین 10درصد قرار داده شد. تیمار استامینوفن سبب افزایش سطح سرمی آلانین­آمینوترانسفراز و آسپارتات­آمینوترانسفراز در موش­ها گردید. عصاره گلبرگ زعفران با دز 20 میلی­گرم/کیلوگرم باعث کاهش در میزان آنزیم­های AST و ALT، هموگلوبین، هماتوکریت و تعداد گلبول­های قرمز گردید. اما تعداد گلبول­های سفید در این دز عصاره افزایش یافت. در بررسی آسیب شناسی، عصاره هیدروالکلی گلبرگ زعفران با دز 20 میلی­گرم/کیلوگرم، آسیب کبدی ناشی از استامینوفن را مانع شد. تغییرات بافتی با یافته­های بیوشیمیایی هماهنگ بود. با توجه به نتایج تحقیق حاضر، عصاره هیدروالکلی گلبرگ زعفران با دز 20 میلی­گرم/کیلوگرم در پیشگیری از مسمومیت حاد کبدی موثر است.

مقاله بررسی محیط های : صحرایی و بیابانی - دریایی و دریاچه‌ای- دلتایی و مصب ها

اختصاصی از نیک فایل مقاله بررسی محیط های : صحرایی و بیابانی - دریایی و دریاچه‌ای- دلتایی و مصب ها دانلود با لینک مستقیم و پر سرعت .

مقاله بررسی محیط های : صحرایی و بیابانی - دریایی و دریاچه‌ای- دلتایی و مصب ها 44 ص با فرمت word 

مقدمه

هر محیطی که در آن زندگی می‌کنیم نظام مخصوص به خود را دارد . این نظام شامل شرایط آب و هوایی ، محیطهای رسوبی ، ژئومورفولوژی ، کشاورزی ، دامداری و ... می‌باشد ، همانطور که ذکر شد در محیط زندگی خود برای تداوم و بقاء حیات نیاز به این نظام داریم ، علاوه بر آن حس کنجکاوی انسان او را به شناخت محیطهای بدون حیات وادار می‌سازد پس می‌بایست این نظام را در محیط‌های مذکور هم مورد بررسی قرار دهد . شناخت این نظام بخشی از علم جغرافیا را تشکیل می‌دهد . آشنائی و شناسایی فرهنگها و آداب ملل مختلف ، نیز چگونگی بهره برداری از منابع طبیعی ، پراکندگی انسانی ، حیوانی ، گیاهی هم بخش دیگر از علم جغرافیا می‌باشد . نیز خود علم جغرافیا مبحثی از مباحث زمین شناسی می‌باشد .

فهرست مطالب: 

مقدمه 1
پیشگفتار 2
محیطهای صحرایی 3
رسوبات محیطهای صحرایی 3
رسوبات حمادا (Hamada deposits) 4
رسوبات سریر (Serir deposits) 5
رسوبات سبخاها و دریاچه‌های نواحی صحرایی 5
رسوبات وادی (Wadi deposits) : 7
رسوبات لسی یا گرد و غباری 8
رسوبات ماسه ای بادی (Eolian Sand Deposits) 8
انواع تپه‌های ماسه ای : 11
رسوبگذاری و ساختمانهای رسوبی در تپه‌های ماسه ای : 13
رسوبات بین تپه ای : 14
اختصاصات رسوبات بادی 16
رسوبات دریاچه ای : 19
رسوبات آواری : 19
رسوبات شیمیایی وبیولوژیکی 21
تشخیص رسوبات دریاچه ای 23
فرایندهای موجود در محیطهای دلتایی عهد حاضر 25
مدلهای دلتایی براساس فرآیندها 30
رخساره‌های دلتایی 31
1-رخساره‌های دلتایی خارج از آب 32
مثالی از دلتاهای قدیمه در ایران : 39
کلیاتی در مورد تشخیص رسوبات دلتایی و نوع آنها 41
منابع و ماخذ : 43

بندر لنگه

اختصاصی از نیک فایل بندر لنگه دانلود با لینک مستقیم و پر سرعت .

در مسیر بنادر خلیج فارس . وقتی که از اقلیم گرم و خشک صحرایی که با وجود زیادی نسبی باران ، این اقلیم خشک است و از حدود بندر دیلم شروع می شود ، بندر بوشهر ، کنگان ، گاوبندی و تا بندر لنگه را در بر می گیرد ، وارد اقلیم گرم و خشک و بیابانی ، که بندر لنگه ، بندر کنگ ، بندر خمیر ، بندر عباس  ، جاسک و تا چاه بهار را شامل می شود ، و در تمام سال رطوبت آن زیاد و معدل گرمای سالانه اش بالاست ، می شویم ، می بینیم که چگونه از بندر لنگه به طرف بندر عباس انبوه بادگیرهایی که نسیم خنک دریا را به قلب شهرها و روستاهای گرم در این نواحی کشانند ، سازندة ترکیب عمده و منطقی سیمای شهر و روستاهاست.

این فایل دارای 8 صفحه می باشد.